ارزیابی اثر تداخل علفهای هرز بر عملکرد و اجزای عملکرد شاهدانه (Cannabis sativa) | ||
دوفصلنامه فنآوری تولیدات گیاهی | ||
مقاله 7، دوره 16، شماره 1، مرداد 1403، صفحه 89-102 اصل مقاله (1.35 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22084/ppt.2024.28354.2128 | ||
نویسندگان | ||
سهراب محمودی* 1؛ جمشید سامانی پور2؛ حسین حمامی1؛ علیرضا صمدزاده3 | ||
1دانشیار، گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بیرجند، بیرجند، ایران | ||
2دانشآموخته کارشناسی ارشد، گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بیرجند، بیرجند، ایران | ||
3مربی، گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بیرجند، بیرجند، ایران | ||
چکیده | ||
بهمنظور بررسی اثر دورههای تداخل و عاری از علفهای هرز بر عملکرد و اجزای عملکرد شاهدانه (Cannabis sativa L.) آزمایشی بهصورت فاکتوریل دو عاملی بر پایه طرح بلوکهای کامل تصادفی با 24 تیمار و سه تکرار در سال 1396 در مزرعه تحقیقاتی دانشکده کشاورزی دانشگاه بیرجند انجام شد. عامل اول تداخل علفهای هرز شامل دو گروه دورهی تداخل و دورهی عاری از علفهای هرز و عامل دوم تراکم شاهدانه در دو سطح هشت و شانزده بوته در متر مربع بود. نتایج نشان داد که در تیمارهای عاری از علفهرز، اجزای عملکرد در تراکم هشت بوته در متر مربع شاهدانه بیشتر از تراکم شانزده بوته در متر مربع بود در حالیکه اجزای عملکرد در تیمارهای تداخل علفهرز در تراکم شانزده بوته در متر مربع بهعلت قدرت رقابت بالاتر شاهدانه بیشتر بود. عملکرد دانه در اثرات ساده تراکم، تداخل و اثر متقابل تراکم و تداخل علف هرز همگی معنیدار شدند. عملکرد شاهدانه در تیمار شاهد فقدان علفهای هرز در تراکم هشت بوته در متر مربع نسبت به تراکم شانزده بوته در متر مربع، 74.2 درصد افزایش داشت ولی در تیمار شاهد آلودگی به علفهای هرز، عملکرد شاهدانه در تراکم شانزده بوته در متر مربع 182.7 درصد افزایش را نسبت به تراکم هشت بوته در متر مربع نشان داد. باتوجه به نتایج این مطالعه میتوان بیان داشت که مطلوبتر است در صورت عدم حضور علفهای هرز از تراکم هشت بوته در متر مربع و در صورت حضور علفهای هرز از تراکم شانزده بوته در متر مربع شاهدانه استفاده کرد. | ||
کلیدواژهها | ||
تداخل علفهای هرز؛ تراکم؛ رقابت؛ گیاهان دارویی | ||
مراجع | ||
Ahn, J. K., Hahn, S. J., Kim, J. T., Khanh, T. D., & Chung, I. M. (2005). Evaluation of allelopathic potential among rice (Oryza sativa L.) germplasm for control of Echinochloa crus-galli P. Beauv in the field. Crop Protection, 24(5), 413-419. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2004.09.009 Amaducci, S., Zatta, A., Pelatti, F., & Venturi, G. (2008). Influence of agronomic factors on yield and quality of hemp (Cannabis sativa L.) fiber and implication for an innovative production system. Field Crops Research, 107(2), 161-169. https://doi.org/10.1016/j.fcr.2008.02.002 Crotser, M. P., & Witt, W. W. (2000). Effect of Glycine max canopy characteristics, G. max interference, and weed-free period on Solanum ptycanthum growth. Weed Science, 48(1), 20-26. https://doi.org/10.1614/0043-1745(2000)048[0020:EOGMCC]2.0.CO;2 Dunan, C. M., Westra, P., Schweizer, E. E., Lybecker, D. W., & Moore, F. D. (1995). The concept and application of early economic period threshold: the case of DCPA in onions (Allium cepa). Weed Science, 43(4), 634-639. https://doi.org/10.1017/S0043174500081753 Erman, M., Tepe, I. K., Buuml, B., Yergin, R., & Takesen, M. (2008). Critical period of weed control in winter lentil under non-irrigated conditions in Turkey. African Journal of Agricultural Research, 3(8), 523-530. Evans, S. P., Knezevic, S. Z., Lindquist, J. L., Shapiro, C. A., & Blankenship, E. E. (2003). Nitrogen application influences the critical period for weed control in corn. Weed Science, 51(3), 408-417. https://doi.org/10.1614/0043-1745(2003)051[0408:NAITCP]2.0.CO;2 Gibson, L. R., & Liebman, M. (2003). A laboratory exercise for teaching critical period for weed control concepts. Weed Technology, 17(2), 403-411. https://doi.org/10.1614/0890-037X(2003)017[0403:ALEFTC]2.0.CO;2 Hamzei, J., Nasab, A.D.M., Khoie, F. R., Javanshir, A., & Moghaddam, M. (2007). Critical period of weed control in three winter oilseed rape (Brassica napus L.) cultivars. Turkish Journal of Agriculture and Forestry, 31(2), 83-90. Hayat, F., Arif, M. & Kakar, K.M. (2003). Effects of seed rates on mungbean varieties under dryland conditions. International Journal of Agriculture and Biology, 5, 160-161. Hourfane, S., Mechqoq, H., Bekkali, A. Y., Rocha, J. M., & El Aouad, N. (2023). A comprehensive review on Cannabis sativa ethnobotany, phytochemistry, molecular docking and biological activities. Plants, 12(6), 1245. https://doi.org/10.3390/plants12061245. Knezevic, S. Z., Evans, S. P., Blankenship, E. E., Van Acker, R. C., & Lindquist, J. L. (2002). Critical period for weed control: the concept and data analysis. Weed science, 50(6), 773-786. https://doi.org/10.1614/0043-1745(2002)050[0773:CPFWCT]2.0.CO;2 Kornpointner, C., Martinez, A. S., Marinovic, S., Haselmair-Gosch, C., Jamnik, P., Schröder, K., Löfke, C., & Halbwirth, H. (2021). Chemical composition and antioxidant potential of Cannabis sativa L. roots. Industrial Crops and Products, 165, 113422. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2021.113422 Makarian, H., Bannayan Aval, M., Rahimiyan mashhadi, H., & Izadi Darbandi, E. (2003). Planting date and population density influence on competitiveness of corn (Zea mays L.) with redroot pigweed (Amaranthus retroflexus L.). Iranian Journal of Field Crops Research, 1(2), 271-279. (In Persian) Martin, S. G., Van Acker, R. C., & Friesen, L. F. (2001). Critical period of weed control in spring canola. Weed Science, 49(3), 326-333. https://doi.org/10.1614/0043-1745(2001)049[0326:CPOWCI]2.0.CO;2 Masoudi, B., Bihamta, M. R., Babaei, H. R., & Peyghambari, S. A. (2008). Evaluation of Genetic Diversity for Agronomic, Morphological and Phenological Traits in Soybean. Seed and Plant Journal, 24(3), 413-427. (In Persian) Maxwell, B.A. (2016). Effects of herbicides on industrial hemp (Cannabis sativa) phytotoxicity, biomass, and seed yield. Masters Theses and Specialist Projects. Paper 1742. https://digitalcommons.wku.edu/theses/1742. Mirshekari, B., Dabagh Mohammadi nasab, A., Noormohammadi, G., Rahimian mashhadi, H. (2006). Effects of redroot pigweed (Amaranthus retroflexus L.) density and time of emergence on yield and yield components of sunflower (Hybrid Hysun-33). Iranian Journal of Crop Science, 7(4), 365-377. (In Persian) Mousavi, M., Zand, E. & Baghestani, M. A. (2005). Effects of crop density on interference of common bean (Phaseolus vulgaris L.) and weeds. Applied Entomology and Phytopathology, 73(1). (In Persian) Piotrowski, S., & Carus, M. (2011). Ecological benefits of hemp and flax cultivation and products. Nova institute, 5, 1-6. Purcell, L. C., Ball, R. A., Reaper, J. D., & Vories, E. D. (2002). Radiation use efficiency and biomass production in soybean at different plant population densities. Crop Science, 42(1), 172-177. https://doi.org/10.2135/cropsci2002.1720 Rehman, M. S. U., Rashid, N., Saif, A., Mahmood, T., & Han, J. I. (2013). Potential of bioenergy production from industrial hemp (Cannabis sativa): Pakistan perspective. Renewable and Sustainable Energy Reviews, 18, 154-164. https://doi.org/10.1016/j.rser.2012.10.019 Salentijn, E. M., Zhang, Q., Amaducci, S., Yang, M., & Trindade, L. M. (2015). New developments in fiber hemp (Cannabis sativa L.) breeding. Industrial crops and products, 68, 32-41. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2014.08.011 Singh, J., & Yadava, H. S. (2000). Factors determining seed yield in early generation of soybean. Crop Research (Hisar), 20(2), 239-243. Swanton, C. J., Weaver, S., Cowan, P., Acker, R. V., Deen, W., & Shreshta, A. (1999). Weed thresholds: theory and applicability. Journal of Crop Production, 2(1), 9-29. https://doi.org/10.1300/J144v02n01_02 Van der Werf, H. M., &Turunen, L. (2008). The environmental impacts of the production of hemp and flax textile yarn. Industrial Crops and Products, 27(1), 1-10. https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2007.05.003 Zimdahl, R. L. (1993). Fundamentals of Weed Science. Academic Press, San Diego, CA, USA. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 323 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 160 |