آمار
| تعداد نشریات | 22 |
| تعداد شماره‌ها | 485 |
| تعداد مقالات | 5,045 |
| تعداد مشاهده مقاله | 9,291,051 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,135,420 |
مطالعه حفاظت انجمادی بذور کلزا (Brassica napus L.) به روش شیشه ای شدن | ||
| دوفصلنامه فن آوری زیستی در کشاورزی | ||
| مقاله 5، دوره 4، شماره 2، آذر 1392، صفحه 33-39 اصل مقاله (257.07 K) | ||
| نوع مقاله: علمی - پژوهشی | ||
| نویسندگان | ||
| محسن منصوری1؛ مهدی کاکایی* 2؛ محمدرضا عبداللهی3؛ شیرین شریفی4 | ||
| 1کارشناس ارشد اصلاح نباتات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد کرمانشاه، باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، کرمانشاه | ||
| 2دانشجوی دوره دکتری اصلاح نباتات (ژنتیک)، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی دانشگاه بوعلی سینا، همدان | ||
| 3استادیار گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی دانشگاه بوعلی سینا، همدان | ||
| 4کارشناس بخش پژوهشی، دانشگاه علوم پزشکی همدان | ||
| چکیده | ||
| در این آزمایش، حفاظت انجمادی به روش شیشهایشدن بذور دو ژنوتیپ کلزا به نامهای آرک-2 (ARC-2) و میلینا (Milena) با دو نوع محلول حفاظتکنندهPVS2 و PVS3 در 5 سطح زمانی (20، 40، 60، 80 و 100 دقیقه) انجام شد. این آزمایش بهصورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار انجام شد. نتایج حاصل از تجزیه واریانس برای صفت درصد جوانهزنی تفاوتهای معنیداری را بین زمانهای مختلف تیمار بذور، ژنوتیپها و اثر متقابل این دو فاکتور در سطح 1 درصد و همچنین اثر متقابل زمان تیمار با نوع محلول حفاظتکننده در سطح احتمال 5 درصد نشان دادند. تیمار بذور کلزا رقم میلینا (Milena) با محلولهای محافظتکننده بهمدت 100 دقیقه بیشترین میزان جوانهزنی را در مقایسه با سایر تیمارها نشان داد. همچنین تیمار بذور کلزا بهمدت 100 دقیقه با محلول PVS2 و زمانهای 20 و 60 دقیقه با محلول PVS3 در مقایسه با سایر ترکیبات تیماری بیشترین درصد جوانهزنی را نشان دادند. زمانهای مختلف تیمار بذور، ژنوتیپها و اثر متقابل این دو تفاوتهای معنیداری را در سطح احتمال 1 درصد و اثر متقابل ژنوتیپ در نوع محلول و اثر متقابل سهگانه تفاوتهای معنیداری را در سطح احتمال 5 درصد برای صفت طول ریشهچه نشان دادند. بهطوریکه 20 دقیقه تیمار بذور کلزا رقم میلینا (Milena) با محلول حفاظتکننده PVS3 بیشترین میزان طول ریشهچه را ایجاد کرد. در ارتباط با صفت طول ساقهچه زمانهای مختلف تیمار بذور و همچنین اثرات متقابل سهگانه ژنوتیپ، نوع محلول و زمان تیمار در سطح 01/0 معنیدار شدند که ترکیب تیماری 60 دقیقه تیمار بذور کلزا رقم آرک-2 (ARC-2) با محلول PVS3 بیشترین میزان طول ساقهچه را در مقایسه با سایر تیمارها ایجاد کرد. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| کلزا؛ حفاظت انجمادی؛ شیشه ای شدن؛ محلول حفاظت کننده؛ جوانه زنی بذر | ||
| مراجع | ||
|
Ashmore, S. E. 1997. Status report on the development and application of in vitro technique for the conservation and use of plant genetic resources.IPGRI, Rome, 67pp.
Belletti, P., Lanteri, S., Lepori, G., Nassi, M. O. and Quagliotti, L. 1990. Factors related to the cryopreservation of pepperand egg plant seeds. Advanced Horticulture Science, 4: 118-120.
Benson, E., Wilkinson, M., Todd, A., Ekuere, V. and Lyon, I. 1996. Development competence and ploidy stability in plants regenerated from cryopreserved potato shoot tips. Cryo-Letters,17:119-128.
Benzing, D. H. 2000. Bromeliaceae: profile of an adaptive radiation. New York, Cambridge University Press.
Chmielarz, P. 2010. Cryopreservation of the non-dormant orthodox seeds of Ulmus glabra. Acta Biologica Hungarica, 61: 224-233.
Gonçalves, S., Fernandes, L., Pérez-García, F., González-Benito, M. E. and Romano, A. 2009. Germination requirements and cryopreservation tolerance of seeds of the endangered species Tuberaria major. Seed Science and Technology, 37: 480-484.
Kakaei, M. 2009. Effects of genotype and drought stress on physiological, morphological, phonological and biochemical traits in winter rape (Brassica napus L.). M. Sc. Thesis, Islamic azad university, kermansha - Iran.
Kholina, A. B. and Voronkova, N. M. 2012. Seed cryopreservation of some medicinal legumes. Journal of Botany, 10: 165-172.
Li, Y., Qu, J., Dong, Z., Wang, T. and An, L. 2008. Storage behavior of Zygophyllum xanthoxylon (Bge.) Maxim seeds at low moisture contents. Acta Physiologiae Plantarum, 30: 651-656.
Lynch, P. T., Benson, E. E. and Harding, K. 2007. Invited commentary climate change: the role of ex situ and cryo-conservation in the future security of economically important, vegetatively propagated plants. Journal of Horticultural Science and Biotechnology,82: 157-160.
Martinkova, Z. and Honěk, A. 2007. The effect of cryopreservation on germination of dandelion seeds. Plant Protection Science, 43:63-67.
Moukadiri, O., Deming, J., O’Connor, J. B. and Cornyo, M. J. 1999. Phenotypic characterization of the progenies of rice plants derived from cryopreserved calli. Plant Cell Report, 18: 625-632.
Sakai, A., Kobayashi, S. and Oiyama, I. 1990. Cryopreservation of nuclear cells of navel orange (Citrus sinensis Osb. var. brasiliensis Tanaka) by vitrification. Plant Cell Report, 9: 30-33.
Towill, L. E. 1991. Cryopreservation In Dodds J. H. (eds), In vitro methods for conservation of plant genetic resources. Chapman and Hall, London, 41-70 pp.
Volk, G. M., Harris, J. L. and Rotindo, K. E. 2006. Survival of mint shoot tips after exposure to cryoprotectant solution components. Cryobiology, 52: 305-308.
Wakui, K., Sato, C., Takahata, Y. and Kaizuma, N. 1998. Long-term storage and cryopreservation of desiccated microspore-derived embryos in Brassica spp. Plant Biotechnology, 15: 123-126. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,465 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 956 |
||