
تعداد نشریات | 22 |
تعداد شمارهها | 485 |
تعداد مقالات | 5,045 |
تعداد مشاهده مقاله | 9,291,020 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,135,403 |
تولید جنیــن های ســـوماتیکی در اندام های مختــلف دو رقــم نخــود زراعـی (Cicer arietinum L.) | ||
دوفصلنامه فن آوری زیستی در کشاورزی | ||
مقاله 2، دوره 4، شماره 2، آذر 1392، صفحه 9-16 اصل مقاله (255.36 K) | ||
نوع مقاله: علمی - پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
علی اکبر مظفری* 1؛ کژال کمانگر2؛ لیا شوشتری3 | ||
1استادیار گروه باغبانی دانشکده کشاورزی دانشگاه کردستان، سنندج | ||
2دانشجوی سابق کارشناسی ارشد گروه باغبانی دانشکده کشاورزی دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرمانشاه، کرمانشاه | ||
3استادیار گروه زراعت دانشکده کشاورزی دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرمانشاه، کرمانشاه | ||
چکیده | ||
عدموجود سیستم مؤثر و کارآ برای باززایی گیاه نخود در شرایط درونشیشهای، یکی از محدودیتهای اصلی در رابطه با دستورزی سلولی و ژنتیکی نخود میباشد. از طریق تکنولوژی کشت بافت، ارتقاء و بهبود این محصول جهت ایجاد و توسعه ارقام مقاوم به بیماری و واریتههای پرعملکرد فراهم میگردد. در دو دهه اخیر برای تولید گیاهان تراریخته و انتقال ژن با استفاده از تکنیکهای جدید مانند جنینزایی سوماتیکی و تولید کالوس مطالعات وسیعی در دست اجراست. در این مطالعه برای انگیزش جنینزایی سوماتیکی در نخود زراعی از ارقام پیروز و کاکا استفاده شد. برای انجام آزمایش از ریزنمونههای مختلف (برگ، هیپوکوتیل و اپیکوتیل) و غلظتهای مختلف تنظیمکنندههای مختلف رشد (زآتین (Zea)، بنزیلآدنین (BA)، نفتالیناستیک اسید (NAA) و 2،4 – دیکلروفنوکسیاستیک اسید (2,4-D)) استفاده شد. آزمایشات شامل دو مرحله بود؛ مرحله اول انگیزش کالوس جنینزا و مرحله دوم جنینزایی سوماتیکی کالوسهای جنینزا روی محیطکشت موراشیگ و اسکوگ (MS) حاوی چهار غلظت (2، 3، 4 و5 میلیگرم در لیتر) 2,4-D و NAA تولید شدند. حداکثر کالوس جنینزا در رقم کاکا از ریزنمونه هیپوکوتیل (3/96%) روی محیطکشت حاوی 5 میلیگرم در لیتر 2,4-D بهدست آمد. برای تولید جنینهای سوماتیکی، کالوسهای جنینزا به محیطکشت MS حاوی 5/0 میلیگرم در لیتر BA و 2,4-D، محیطکشت ½ MS حاوی 1 میلیگرم در لیتر Zea و محیطکشت MS حاوی 5/0 میلیگرم در لیتر BA و 1 میلیگرم در لیتر 2,4-D انتقال داده شدند. بالاترین فراوانی جنین سوماتیکی مرحله قلبی (33/58%) در رقم کاکا از ریزنمونههای برگ روی محیطکشت MS حاوی 5/0 میلیگرم در لیتر BA و 2,4-D حاصل شد. | ||
کلیدواژهها | ||
نخود؛ جنینزایی؛ القاءکالوس؛ تنظیم کننده رشد | ||
مراجع | ||
Ali, A., Naz, S. and Iqbal, J. 2007. Effect of different explants and media compositions for efficient somatic embryogenesis in sugarcane. Pakistan of Botany, 39(6): 1961-977.
Amir Islam, M., Zubair, H., Imtiaz, N. and Chaudhary, M. F. 2005. Effect of different plant growth regulators for the Economical Production of in vitro Root Culture of Cicer aritinum L. International Journal of Agriculture and Biology, 7(4):621-626.
Aghaii, M. and Kanooni, H. 2004. Chickpea. Taghbostan Press, 257 pp.
Barna, K. S. and Wakhlu, A. K. 1993. Somatic embryogenesis and plant regeneration from callus cultures of chickpea (Cicer arietinum L.). Plant Cell Reports, 12: 52-524.
Bronner, R., Jeannin, G. and Hahne, G. 1994. Early cellular events-during organogenesis and sonatic embryogenesis induced on immature zygotic embryos of sunflower (Helianthus annuus). Canadian Journal of Botany, 72: 239-248.
Dudits, D., Gyorgyey, J., Bogre, L. and Bako, L. 1995. Molecular biology of somatic embryogenesis. cluwer Academic Publishers, 563pp.
Elke, B. and Hess, D. 1994. In vitro regeneration and propagation of chickpea (Cicer arietinum L.)from meristem tips and cotyledonary nodes. In vitro cell Division Biology, 30: 75-80.
Fernandez, H., Perez, C. and Sanchez-Tam, R. 2000. Modulation of the morphogenic potential of the embryonic axis of Juglans regia L. by cultural conditions. Plant Growth Regulation, 30: 125-131.
Gaj, M. D. 2004. Factors influencing somatic embryogenesis induction and plant regeneration with particular reference to Arabidopsis thaliana L. Plant Growth Regulation, 43: 27-47.
Gerdakaneh, M., Mozafari, A. A., Khalighi, A. and Sioseh-mardah, A. 2010. Studies on somatic embryogenesis in strawberry (Fragaria x ananassa Duch.) cultivars through using a range of explants types. Ph.D. thesis. Islamic Azad University, Science and Research Branch of Tehran, Iran.
Iantcheva, A., Vllahova, M., Bakalova, E., Kondorosi, E., Elliott, M. C. and Atanassov, A. 1999. Regeneration of diploid annual medics via direct somatic embryogenesis promoted by thidiazuron and benzylaminopurine. Plant Cell Reports, 18: 904-910.
Jimenez, V. M. and Thomas, C. 2005. Participation of plant hormones in determination and progression of somatic embryogenesis. Plant Cell Monograohs. DOI 10.1007/7089_034/ Published online.
Jimenez, V. M. and Bangerth, F. 2001. Endogenous hormone levels in explants and in embryogenic and nonembryogenic cultures of carrot. Physiology Plant, 111: 389- 395.
Kahrizi, D. and Soorni, J. 2013. Study on shoot regeneration and somatic embryogenesis in cumin (Cuminum cyminum L.) landraces. Biharean Biologist, 7(1):.37-41.
Kiran, G., Sujata, M., Srinathrao, P. B. and Kavi, K. 2010. Direct somatic embryogenesis and plant regeneration from immature explants of chickpea. Biologia Plantarum,54(1): 121-125.
Kitamiya, E., Suzuki, S., Sano, T. and Nagata, T. 2000. Isolation of two genes that were induced upon the initiation of somatic embryogenesis on carrot hypocotyls by high concentrations of 2,4- D. Plant Cell Reports 19: 551-557.
Krishnamurthy, K. V., Suhasini, K. and Sagar, A. P. 2000. Agrobacterium mediated transformation of chickpea (Cicer arietinum L.)embryo axes. Physiology and Molecular Biology of Plants, 19: 235-240.
Mashayekhi- Nezamabadi, K. 2000. The protein synthesis spectrum during the induction phase of somatic embryogenesis in carrot (Daucus carota L.)culture and the role of nitrogen forms for embryo development. Institute of plant nutrition department of tissue culture Justus Liebig university, Giessen, Germany pp5.
Merkle, S. A., and Nairn, C. J. 2005. Hardwood Tree Biotechnology. In vitro Cellular and Developmental Biology- Plant, 41: 602-619.
Murashige, T. and Skoog, F.1962.A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Plant Physiology, 15: 478-497.
Naz, G. 1995. Phenolics in vitro cultures of chickpea during callogenesis and organogenesis. Ph.D. Thesis. Punjab University, Pakistan.
Naz, S., Ali, A., Siddique, F. A. and Iqbal, I. 2008. Somatic embryogenesis from immature cotyledons and leaf calli of chickpea(Cicer arietinum L.). Pakistan Journal of Botany, 40(2): 523-531.
Quiroz -Figueroa, F. R. R., Rojas Herrera, R. M., Galaz Avalos, V. M. and Loyola, V. 2006. Embryo production through somatic embryogenesis can be used to study cell differentiation in plants. Plant Cell Tissue Organ Culture, 86: 285-301 DOI 10.1007/s 11240-006-9139-6.
Rao, B. G. 1990. Regeneration from induced embryoid of gram (Cicer aritinum L.) Advance of plant Science, 3: 299-302.
Thomas, C., Meyer, D., Himber, C. and Steinmetz, A. 2004. Spatial expression of a sunflower SERK gene during induction of somatic embryogenesis and shoot organogenesis. Plant Physiology and Biochemistry, 42: 35-42.
Tokuji, Y. and Kuriyama, K. 2003. Involvement of gibberellins and cytokinin in the formation of embryogenic cell clumps in carrot (Daucus carota L.). Journal of Plant Physiology, 160: 133-141.
Victor, J. M. R., Murch, S. J., KrishnaRaj, S. and Saxena, P. K. 1999. Somatic embryogenesis and organogenesis in peanut: The role of thidiazuron and N6-benzylaminopurine in the induction of plant morphogenesis. Plant Growth Regulation, 28: 9-15.
Zare, A. R., Solouki, M., Omidi, M. and Irvani, N. 2010. Callua induction and plant regeneration in ferula assa Foetida L. Trakia Journal of Sciences, 8(1): 11-18.
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,638 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,004 |