
تعداد نشریات | 22 |
تعداد شمارهها | 485 |
تعداد مقالات | 5,045 |
تعداد مشاهده مقاله | 9,291,017 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,135,403 |
بررسی تأثیر هورمون و کانامایسین روی کالوسهای گیاه دارویی شقایق (Papaver somniferum) | ||
دوفصلنامه فن آوری زیستی در کشاورزی | ||
مقاله 1، دوره 6، شماره 1، خرداد 1394، صفحه 1-10 اصل مقاله (1.22 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
زیبا نظری1؛ احمد اسماعیلی* 2؛ فرهاد نظریان فیروزآبادی3؛ علیرضا زبرجدی3 | ||
1دانش آموختهی کارشناسیارشد بیوتکنولوژی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه لرستان، لرستان | ||
2استادیار گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه لرستان، لرستان | ||
3دانشیاران گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشگاه رازی کرمانشاه، کرمانشاه | ||
چکیده | ||
گیاه شقایق(Papaver somniferum L.) یکی از قدیمیترین گیاهان دارویی است که بواسطه بیوسنتز و ذخیره آلکالوئیدهای بنزیل ایزوکوئینولی دارای اهمیت خاص میباشد. بهمنظور بهرهبرداریهای زیستفناروانه از این گیاه بایستی بهینهسازیهای لازم مثل کشت بافت و تراریختی ژنتیکی صورت گیرد. از میان عوامل مؤثر در تراریختی عامل گزینشگر و برهمکنش آن با سایر عوامل از اهمیت خاصی برخوردار است. بهمنظور بررسی تحمل کالوسهای این گیاه نسبت به گزینشگر کانامایسین، در مرحله کالوسزایی سه آزمایش مجزا روی سه نوع ریز نمونه هیپوکوتیل، کوتیلدون و ریشه طراحی شد. آزمایشهای مربوط به کالوسزایی بهصورت فاکتوریل با عاملهای محیطکشت پایه در دو سطحB5 و MS و تنظیمکنندههای رشد در دو سطح 1 میلیگرم در لیتر 2,4- D و 5/. میلیگرم در لیتر 2,4- D + 5/. میلیگرم در لیتر BA در قالب طرح پایه کاملاً تصادفی با هشت تکرار انجام شد. نتایج مقایسه میانگین، بالاترین درصد کالوسزایی را در محیطکشت B5 نشان داد. در مرحله جنینزایی نیز دو آزمایش فاکتوریل (با سه عامل محیط پایه، هورمون و کانامایسین) با هشت تکرار در قالب طرح پایه کاملاً تصادفی اجرا شد. نتایج بیشترین جنینزایی و باززایی جنینها را از کالوسهای بهدست آمده از ریزنمونه هیپوکوتیل در محیط کشت B5 حاوی 1 میلیگرم در لیتر 2,4- D و در سطح 25 میلیگرم در لیتر کانامایسن را نشان داد. | ||
کلیدواژهها | ||
شقایق؛ آگروباکتریوم؛ جنینزایی سوماتیکی؛ ریزنمونه | ||
مراجع | ||
Belny, M. D., Herouart, B., Thomassset, H., David Jacquin-Dubeuil, A. and David, A. 1997. Transformation of Papaver somniferum cell suspension culture with sam1 A. thaliana in cell lines of different s- adnosyl-1-methonine synthase activity. physiologia plantarum, 99: 233-240
Chitty, J. A., Allen, R. S., Fist, A. J. and Larkin, P. J. 2003. Genetic transformation incommercial Tasmanian cultivars of opium poppy, Papaver somniferum, and movement of transgenic pollen in the field. Plant Biology 30 (10): 1045–1058
Dunlap, J. R., Kresorich, S. and Mcgce, R. E. 1986. The effects of salt concentration on Auxin stability in culture media, Plant Physio, 8:934-936
Doyle, J. J. and J. L. Doyle. 1990. Isolation of Plant DNA From Fresh Tissue. Focus,12:13-15.
Facchini P. J., Huber-Allanach K. L. and Tari L. W. 2000. plant aromatic L-amino acid decarboxyla se: evolution, biochemistry, regulation and temperature. Phytochemistr y 54: 121-138
Facchini, P. J. and De-Luca, V. 2008. opium poppyand Madagascar periwigncle: model non- model system to investigate alkaloid biosynthesis in plant. Plant journal 56: 763-784
Facchini, P. J., Loukanina, N. and Blanche, V. 2008. Genetic transformation via somatic embryogenesis to establish herbicide-resistant opium poppy. Plant cell rep, 27: 719-727
George, E. F., Hall M. A. and De-Klerk, G. J. 2008. Plant propagation by tissue culture 3rd Edition. springer, Dordreacht, the Netherlands 1:501
Ikuta, A. and Furuya, K. 1974. Alkaloids of callus tissues and redifferentiated in the Papaveraceae , PHytochemistry, 13; 2175-2179
Ilahi, I. and Jabeen, M. 1987. callus and plantlet induction in papaver somniferum, Acta Horticulturae 12; 697-699
Kassem A. M. and Jacquin A. 2001. Somatic embryogenesis, rhizogenesis, and morPHinanalkaloids production in two species of opium poppy Journal of Biomedicine and Biotechnology,1:270-78
Nessler, C. L. 1982. Somatic emberyogenesis in the opium poppy, Papver somniferum, PHysiologia plantarum, 55: 453-458.
Nessler, C. L. 1998. In vitro culture technologies. In Poppy- the genus Papaver (Harwood Academi c:Amsterdam): 209-217.
Nap, J. P., Bijvoet, J. and W. J. 1993. Biosafety of kanamycin-resistant transgenic plants,Plant Molecular Biology Reporter, 11(2):165-185
Ovečka, M., Bobák, M. and Šamaj, J (1997) Development of shoot primordia in tissue culture of Papaver somniferum L, Biologia Plantarum, 40( 3): 321-328
Park S. U. and Facchini P. J. 2000. Agrobacterium-mediated transformation of opium poppy, papaver somniferum , via shoot organogenesis. Journal of plant physiology 51; 1005-1016
Schmeller T. and Wink M. 1998. Utilization of alkaloid in modern medicine. in alkaloids-biochemistry, ecology and medicinal application. (Eds MF Roberta and M Wink), Plentum press: 435-459
Tetenyi, P. 1997. opium poppy (Papaver somniferum L.): Botany and Horticulture. Hurticulture Reviews: 373-408
Yoshmatsu, K. and Shimomura, K. 1992. Trnansformation of opium poppy (Papaver somniferum) with Agrobacterium rhizogenesis MAFF-03-01724. Plant cell reports, 11;132-136
Ying, H. S., Xiang, Y. Z., Yu, B. L., Chuan, L. Z., Sharman, D. O. and Xian, S. Z. 2009. Auxin- induced WUS experiments is essential for embryonic stem cell renewal during somatic embryogenesis in Arabidopsis. The Plant Journal, 59: 448-460
Wang, Y. 2006. Agrobacteium Protocoles. Methods in Molecolar BiologyTM HUMANA PRESS Inc
Zhang Zhang, H. A., Liu, B. H., Wang, H. M. and Yao C. B. 2005. Effects of kanamycin on tissue culture and somatic embryogenesis in cotton, Plant Growth Regulation, 33(2): 137-149
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,548 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,574 |