آمار
| تعداد نشریات | 22 |
| تعداد شماره‌ها | 485 |
| تعداد مقالات | 5,045 |
| تعداد مشاهده مقاله | 9,291,062 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 6,135,422 |
شناسایی و بررسی تنوع ژنتیکی جدایههای Botrytis cinerea عامل کپک خاکستری توت‌فرنگی در استان کردستان | ||
| دوفصلنامه فن آوری زیستی در کشاورزی | ||
| مقاله 1، دوره 5، شماره 2، آذر 1393، صفحه 1-10 اصل مقاله (486.09 K) | ||
| نوع مقاله: علمی - پژوهشی | ||
| نویسندگان | ||
| ساقی یونسی بانه1؛ محمد جواد سلیمانی* 2؛ دوستمراد ظفری2؛ بهمن بهرام نژاد3 | ||
| 1دانش‌آموخته بیماری‌شناسی گیاهی، گروه گیاهپزشکی دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی‌سینا، همدان | ||
| 2. دانشیار، گروه گیاهپزشکی دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی‌سینا، همدان | ||
| 3دانشیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه کردستان، سنندج | ||
| چکیده | ||
| تعداد 19 جدایه‌بوتریتیس از توت‌فرنگی‌های دارای علائم بیماری کپک خاکستری از مزارع و گلخانه کشت هیدروپونیک توت‌فرنگی از استان کردستان جمعآوری شدند. جدایهها براساس خصوصیات مورفولوژیکی به‌عنوان گونه Botrytis cinerea Pers.: Fr., تشخیص داده شدند. به‌منظور تأیید و شناسایی بیشتر گونه موردنظر به روش مولکولی از آغازگرهای اختصاصی C729 استفاده شد. جدایههای مورد بررسی با انجام PCR با آغازگر اختصاصی و تکرار آزمایش باند 700 جفت‌بازی مختص گونه را تکثیر کردند. تنوع ژنتیکی جدایههای موجود با استفاده از نشانگرهای مولکولی RAPD مورد بررسی قرار گرفت. براساس نتایج به‌دست آمده از مطالعه تنوع ژنتیکی، جدایهها در چهار گروه اصلی قرار گرفتند. با توجه به نحوه‌ی گروهبندی جدایهها، در نگاه اول مشاهده شد که گروه جدایههای گلخانه از گروه جدایههای مزارع مختلف تفکیک شدند اما برخی جدایهها از این الگو پیروی نکرده و متفاوت بودند. همچنین در بررسی جدایههای مزارع حومه استان و ارتباط آنها با یکدیگر، ارتباط مشخصی بین نزدیکی جدایهها از لحاظ جغرافیایی و خصوصیات ژنتیکی و الگوی RAPD آنها با هم وجود نداشت بلکه بعضاً مشاهده شد که برخی جدایههای دور از هم از لحاظ جغرافیایی شباهت بیشتری به همدیگر، نسبت به جدایههای جمعآوری شده از مزارع نزدیک به هم داشتند. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| Botrytis cinerea؛ مورفولوژی؛ آغازگر اختصاصی؛ PCR؛ تنوع ژنتیکی؛ RAPD | ||
| مراجع | ||
|
Alfonso, C., Raposo, R. and Melgarejo, P. 2000. Genetic diversity in Botrytis cinerea population on crops in greenhouses in south-eastern Spain. Plant Pathology, 49: 243-251.
Amin, Sh., Morid, B., Rezaee, S. and Haj Mansoor, Sh., 2012. Investigation on transposable elements frequency in Botrytis cinerea isolates in Iran, 20 Plant Protection Congress.
Ellis, MB. 1971. Dematiaceus, Hyphomycetes. Common wealth mycological institute, 178-184.
Jarvis, WR. 1977. Botryotinia and Botrytis Species: Taxonomy, Physiology, and Pathogenicity. Research Branch, Canada Department of Agriculture, Ottawa, Canada.
Kerssies, A. and Bosker-van Zessen, A. I., 1997. Variation in pathogenecity and DNA polymorphism among Botrytis cinerea isolates sampled inside and outside a glasshouse. Plant Disease, 81: 781-786.
Menzinger, W. 1966. Zur variabilitat und taxonomie von arten und formen der gattung Botrytis mich. I. untersuchungen zur kulturbedingten variabilitat morphologischer eigenschaften von formen der gattung Botrytis. Aus dem Institute für pflanzenkrankheiten und pflanzenschutz der technischen hochschule hannover. Zentralbl Bakteriol Parasitenkd Infektionskr Hyg, 120: 141-178.
Mirzaei, S., Mohammadi Goltapeh, E. and Shams-bakhsh, M. 2008. Identification of Botrytis spp. on plants grown in Iran. Phytopathology, 156: 21-28.
Mirzaei, S., Mohammadi Goltapeh, E. and Shams-bakhsh, M. 2009. Genetic and phenotypic diversity of Botrytis cinerea isolates in Iran. Phytopathology, 157: 474-482.
Moyano, C., Alfonso, C., Gallego, J., Raposo, R. and Melgarejo, P. 2003. Comparison of RAPD and AFLP marker analysis as a means to study the genetic structure of Botrytis cinerea populations. European Journal of Plant Pathology, 109: 515-522.
Murray, M. G. and Thompson, W. F. 1980. Rapid isolation of high molecular weight plant DNA. Nucleic Acid Research, 8: 4321-4325.
Nielsen, K., Justesen, AF., Jensen, DF. and Yohalem, DS. 2001. Universally primed polymerase chain reaction alleles and internal transcribed spacer restriction fragment length polymorphisms distinguish two subgroups in Botrytis aclada distinct from B. byssoidea. Phytopathology, 91: 527-533.
Rigotti, S., Viret, O. and Gindro, K. 2006. Two new primers highly specific for detection of Botrytis cinerea Pers.: Fr. Phytopathology. Meditterranea, 45: 253-260.
Rohlf, FJ. 1998. NTSYS pc Version 2.0: User Guide. Applied Biostatistics Inc. Phylogeny Analysis using NTSYS-pc.
Thompson, J. R. and Latorere, B. A. 1999. Characterization of Botrytis cinerea from table grape in Chile using RAPD-PCR. Plant Disease, 83(12).
Utkhede, RS. and Mathur, S. 2002. Biological control of stem canker of greenhouse tomatoes caused by Botrytis cinerea. Canadian Journal of Microbiology, 48: 550-554.
Vander Vlugt Bergmans, C. J. B., Brandwagt, B. F., Van't klooster, J. W., Wagemakers, C. A. M. and Van kan, J. A. L. 1993 Genetic variation and segregation of DNA polymorphism in Botrytis cinerea. Mycological Research, 97: 1193-1200.
Zadehdabagh, Gh., Kiani, Sh., Alizadeh, A. and Rokni, N. 1998. Evaluation virulence of Botrytis cinerea isolates collected from Iran's different regions on the cut flower rose in greenhouse condition.18th Plant Protection Congress.
| ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 3,080 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,394 |
||